1樓：匿名使用者
dna電泳一般使用的都是瓊脂糖凝膠電泳,電泳的驅動力靠dna骨架本身的負電荷. 蛋白質電泳（一般指sds-page）一般使用的都是聚丙烯醯胺凝膠電泳,電泳的驅動力靠與蛋白質結合的sds上所攜帶的負電荷. 所以相同點就是樣品都是帶負電荷的,從負極向正極移動,移動的距離都和樣品的分子量有關.
而且這兩個電泳體系可以互相交換使用.進行大分子蛋白質電泳時,可以考慮換用瓊脂糖凝膠,因為該體系孔徑大.相反,如果需要精確到各位數鹼基的dna電泳也可以使用聚丙烯醯胺凝膠系統,因為使用該系統可以將相差一個鹼基的兩條dna鏈分開.
不同點首先是樣品不同.這個就不用多說了.其次是結果的觀察方法不同.
dna電泳普遍使用eb做染料,在紫外燈下觀察；而蛋白電泳使用的考馬斯亮藍染色,還需要經過脫色步驟,不過觀察起來比較簡單.還有就是膠體系的差別,dna電泳通常是一膠跑到底,而蛋白質電泳則會有分離膠和濃縮膠之區別. 電泳中樣品移動的本質確實是樣品所攜帶的電荷.
但是,區分這些條帶直接可以用分子量而無需使用電荷數,是因為這些樣品的電荷/分子量比都是恆定的了.以dna分子為例,它在電泳中的移動是靠其骨架中磷酸所攜帶的負電荷來實現的,而這個磷酸分子又是每一個核苷酸中都有的,所以dna分子所攜帶的負電荷數是由其核苷酸總數決定的.而且,dna分子中核苷酸的組成動輒成百上千,在如此大的分子量面前,討論單個核苷酸之間分子量的差別就顯得毫無意義.
這樣,dna分子中負電荷的量就可以用dna的分子量來代替,反過來,dna的分子量也就可以用dna分子所攜帶的電荷來代替（一句話,dna分子的電荷/分子量比是恆定的）. 這在蛋白電泳中（特別是sds-page中）是一樣的.在sds-page中,sds將蛋白質變性成直線分子並緊密包裹於其上,使得其所攜帶的電荷與蛋白分子量成了一定的比例,剩下的就和核酸電泳一樣了.
2樓：
紙電泳，醋酸纖維素薄膜電泳，澱粉凝膠電泳，瓊脂（糖）凝膠電泳及聚丙烯醯胺凝膠電泳等
3樓：匿名使用者
不一定 大多是均一物質,若電泳效果不好,出現拖尾現象,就不是均一物質.
2，比較瓊脂糖電泳和聚丙烯醯胺電泳的異同
4樓：匿名使用者
dna電泳常用的支援介質有瓊脂糖
凝膠和聚丙烯醯胺凝膠.
瓊脂糖凝膠的凝膠孔徑大，版適合大分子dna電泳和需權要快速簡單分析的dna電泳，電泳方式一般採用水平潛水電泳。優點是快速簡單，但解析度不是很高，對於差異較小的 dn**段難以分辨。
聚丙烯醯胺凝膠電泳適宜分離鑑定低分子量蛋白質、小於1kb的dn**段和dna序列分析.其裝載的樣品量大，**dna純度高.長度僅相差0.
2%(即500bp中的1bp)的核苷酸分子即能分離.
一般說來，分離鑑定小於1000個核苷酸的核酸片段可用聚丙烯醯胺電泳，分離鑑定0.1-50kb的dn**段可用恆場常規瓊脂糖電泳，而分離鑑定大於50kb的
dn**段則需採用脈衝場瓊脂糖電泳。
跑電泳的膠有幾類
5樓：匿名使用者
電泳中的區帶電泳一般較為常用，其可分為4大類：
1.濾紙電泳和薄膜電泳（如醋酸纖維薄膜電泳和聚醯胺薄膜電泳）。
2.粉末電泳，支援介質有澱粉、纖維素粉或矽膠粉等，與適當溶劑調和鋪平板。
3.細絲電泳，介質為尼龍絲或其他人造絲，是微量電泳。
4.凝膠電泳，介質如你所說的。
此外還有毛細管電泳，等電聚焦（其可以說是一種自由介面電泳，其一般用兩性電解質作介質，如脂肪族多胺和多羧類的同系物、蔗糖溶液等，如果是做凝膠等電聚焦則使用瓊脂糖和聚丙烯醯胺或葡聚糖凝膠作為介質）等等。
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